O trypanosoma rangeli é um protozoário que, embora estreitamente relacionado ao t. cruzi, não é considerado patogênico para o hospedeiro mamífero, no qual sua capacidade de multiplicação é desconhecida. uma vez que diversos estudos já endereçaram esta questão, sem resultados consensuais, o objetivo deste estudo foi investigar marcadores moleculares e estruturais da divisão celular no t. rangeli, como uma estratégia para detectar a multiplicação celular mesmo sem visualização direta do processo. o ciclo celular in vitro das formas epimastigotas proliferativas da cepa choachí foi estudado, sendo sua duração total calculada em 26,2 horas, sendo 11,91 horas na fase g1, 6,13 horas na fase s, 3,88 horas na fase g2, 1,13 horas na mitose (m) e, por fim, 3,15 horas na citocinese (c). esta progressão no ciclo pôde ser acompanhada também por citometria de fluxo, por meio da avaliação do conteúdo de dna, gerando histogramas com um pico referente a parasitos em g1 e outro a parasitos em g2/m/c. como potenciais marcadores moleculares, foram escolhidos os transcritos para as proteínas aurora quinase 1, polo-like quinase, mob1 e track, as quais já foram associadas à citocinese de outros tripanosomatídeos. os níveis de transcritos para essas proteínas foram avaliados em epimastigotas em fase exponencial de crescimento por pcr em tempo real quantitativa (qpcr), sendo comparados a parasitos com taxas de multiplicação sabidamente reduzidas – epimastigotas em fase estacionária ou tratados com hidroxiureia – e a parasitos cuja capacidade de multiplicação é desconhecida – os tripomastigotas. os transcritos para aurora quinase 1 e, principalmente, polo-like quinase estiveram fortemente associados a parasitos com altas taxas de divisão celular, ao passo que os transcritos para mob1 e track tiveram uma variação independente. em todos os ensaios, polo-like quinase demonstrou ser o mais promissor marcador molecular da citocinese, apresentando significantes reduções em sua abundância relativa de transcritos nas formas com baixas taxas de multiplicação celular, além de ser detectada como uma proteína de cerca de 70 kda apenas nas formas epimastigotas em fase exponencial de crescimento. assim, este estudo demonstrou o potencial da metodologia de qpcr utilizando polo-like quinase como marcador molecular, bem como da citometria de fluxo, para estudar o comportamento do t. rangeli em seu hospedeiro mamífero, abrindo novas perspectivas para a compreensão de seu ciclo biológico.